在流體環境下細胞培養進行粘附實驗,該應用描述了一種在流動下的粘附試驗，該試驗旨在研究特定細胞表面分子的作用，以確定它們在細胞附著和粘附到其他細胞類型期間的潛在相互作用。

　　實驗流程　　

　　1.準備EOMA細胞稀釋液：根據制造商的說明，使用非酶細胞解離溶液分離先前培養的EOMA細胞。使用血細胞計數器（Neubauerchamber）對細胞進行計數。在EC培養基中將細胞稀釋至1.2x106個細胞/ml的濃度?！　?/p>

　　2.種入EOMA細胞：在3個 µ-SlidesI0.6mmLuer（ibidi，80186）中加入150µlEOMA細胞稀釋液（每個µ-Slide1.75x105EOMA細胞），然后孵育3小時。

　　表1：實驗設置

　　3.啟動流量：播種三小時后，將2個µ-Slides連接到流體單元FU，使用總量2.7毫升EC培養基。在8.2mbar的壓力下將EOMA細胞表面的剪切應力設置為0.5dyn/cm2。測量流速并使用兩個FU的平均值來計算校準因子。提前孵育FU和連接的載玻片過夜。第三個帶有EOMA細胞的µ-Slide用作靜態控制。在沒有任何流動的情況下孵育它過夜。

　　4.準備MM細胞：根據制造商的方案，用CellTrackerGreen(CMFDA)染料在600µlRPMI培養基（不含FCS）中染色6x105MM細胞。標記后，離心細胞并使用血細胞計數器對其進行計數。

　　5.開始與MM細胞共培養：停止流動并在無菌條件下從FU水庫中取出EC培養基。要開始共培養，將RPMI培養基（含10%FCS）和EC培養基以1:1的比例混合，并填充該混合物總體積為2.5ml，其中含有1.5x105MM注入兩個FU儲液罐。將FU重新連接到泵系統并繼續流動24小時。

　　6.分子阻斷：將MM細胞添加到ECs后24小時，用100µg/ml抗體（載玻片 #2）或相應的同種型對照（載玻片 #1）處理細胞，將它們直接添加到FU，無需更換介質。將孵育保持在流動狀態下24小時。

　　7.清洗和成像：從FU上斷開µ-Slides。用PBS清洗細胞一次，以去除任何非貼壁細胞。使用共聚焦顯微鏡獲取熒光圖像，以可視化附著在EC層上的標記MM細胞。

　　圖1：與同種型對照處理（左圖）相比，阻斷特定表面分子（右圖）時，MM細胞對ECs的粘附性降低